Nguyẽn Viẹt Bác * Vũ Ngọc Út

* Tác giả liên hệ (nvbac87@gmail.com)

Abstract

Effects of different application frequencies of ozone disinfection on metamorphosis and survival rate of mud crab larvae (Scylla paramamosain) were carried out to improve the production and survival rate of mud crab larviculture. The experiment was conducted with four treatments in triplicates including (1) control (using iodine) and ozone disinfection at (2) every day; (3) every 2 days, and (4) every 3 days. The larvae were stocked in 50 L tanks at a density of 200 larvae/L. The ozone generator (4g/h) supplied ozone for the tanks through 3 vinyl pipes connected with air stones. The results showed that total bacteria count, Vibrio count and parasitic prevalence in ozone disinfected treatment were 2.2 x 103 cfu/mL, 0.20 x 103 cfu/mL and 4,86%, respectively; and were the highest compared to others (p<0.05). The metamorphosis and total length of all larval stages in the treatments applyiing ozone were significantly higher than the control treatment (p<0,05). Survival rate of Crab-1 in every 2 days ozone disinfected treatment was the highest (10,5 %) and significantly higher than that of other treatments (p<0,05). The results suggested that ozone disinfection could be applied every 2 days in mud crab larviculture to control bacteria and parasitic infection without compromising on the larval survival.
Keywords: Mud crab, larvae, ozone, Scylla paramamosain

Tóm tắt

Nghiên cứu ảnh hưởng của tần suất xử lý ozone đến tỷ lệ sống và biến thái của ấu trùng cua biển (Scylla paramamosain) được thực hiện nhằm nâng cao năng suất và tỷ lệ sống trong ương ấu trùng cua biển. Thí nghiệm gồm 4 nghiệm thức với tần suất xử lý ozone khác nhau gồm (1) đối chứng, (2) xử lý ozone 1 ngày/lần, (3) xử lý  ozone 2 ngày/lần và (4) xử lý ozone 3 ngày/lần. Mật độ ấu trùng bố trí trong thí nghiệm là 200 con/L. Máy ozone có công suất 4 g/h, lắp với 3 vòi sục có gắn đá bọt. Kết quả thí nghiệm cho thấy, mật độ vi khuẩn tổng, Vibrio và tỷ lệ nhiễm ký sinh trùng trên ấu trùng sau khi xử lý ozone thấp nhất ở nghiệm thức tần suất 1 ngày/lần, lần lượt là 2,2 x 103 cfu/mL, 0,20 x 103 cfu/mL và 4,86% khác biệt có ý nghĩa (p<0,05) với các nghiệm thức còn lại. Chỉ số biến thái, tăng trưởng về chiều dài của ấu trùng qua các giai đoạn ở các nghiệm thức có xử lý ozone cao hơn (p<0,05) so với nghiệm thức đối chứng. Tỷ lệ sống đến Cua 1 cao nhất ở nghiệm thức xử lý ozone với tần suất 2 ngày/lần (10,5%) khác biệt có ý nghĩa (p<0,05) với các nghiệm thức còn lại. Kết quả nghiên cứu cho thấy, xử lý ozone với tần suất 2 ngày/lần giúp kiểm soát tốt vi khuẩn và kí sinh mà không ảnh hưởng đến tỷ lệ sống của ấu trùng cua biển.
Từ khóa: Ấu trùng, Cua biển, Ozon, Scylla paramamosain

Article Details

Tài liệu tham khảo

Azam, K., and Narayan, P., 2013. Safe usage of antibiotic (Oxytetracycline) in larval rearing of mudcrab, Scylla serrata(Forsskål, 1775) in Fiji. World Journal of Fish and Marine Science.5(2): 209 – 213

Ballagh, D.A., Pankhurst, P.M., and Fielder, D.S., 2011. Embryonic development of mulloway, Argyrosomusjaponicus, and egg surface disinfection using ozone. Aquaculture,318(3): 475 – 478.

Boyd, C.E., 1990. Water quality in ponds for aquaculture. Auburn University. Alabama Agricultural Experiment station, 482 pp.

Beguer, M., Pasquaud, S., Noel, P., Giradin, M., and Boet, P., 2008. First description of heavy skeletal deformations in Palaemonshrimp populations of European estuaries: the case of the Gironde (France). Hydrobiologia. 607(1): 225-229.

Coman, G.J., and Sellars, M.J., 2007. Tolerance of PenaeusmonodonFabriciusembryos to ozoneatedseawater. Aquaculture Research. 38(4): 420 - 428.

Cholik, F., 1999. Review of mud crab research in Indonesia. In:C.P. Keenan and A.W. Blackshaw(Eds.). 1999. Mud crab Aquaculture and Biology. ACIAR proceedingsNo. 78. Watson fergusonand company, Brisbane, Australia: 14 - 20.

Châu Tài Tảo, NguyễnThanh Phương, Đỗ Thị Thanh Hương và Trần Ngọc Hải, 2012. Đánh giá chất lượng hậu ấu trùng tôm sú Penaeus monodonqua các lần sinh sản của tôm mẹ. Tạp chí khoa học trường Đại học Cần Thơ. 23: 20 – 30.

Dat, H.D., 1999. Description of mud crab (Scylla spp.) culture methods in Vietnam. In:C.P. Keenan and A.W. Blackshaw(Editors), 1999. Mud crab Aquaculture and Biology. ACIAR proceedings No. 78. Watson Ferguson and Company, Brisbane, Australia: 67 - 71.

De Pedro, J.B., Quinitio, E.T.,and Parado-Estepa, F.D., 2007. Formalin as an alternative to trifluralin as prophylaxis against fungal infection in mud crab Scylla serrata(Forsskål) larvae. Aquaculture Research. 38(14): 1554 -1562

Forneris, G., Bellardi, S., Palmegianoc, G.B., Saroglia, M., Sicuroa, B., Gascoe, L., and Zoccaratoe, I., 2003. The use of ozone in trout hatchery to reduce saprolegniasisincidence. Aquaculture.221(1-4): 157–166.

Grotmol, S., Dahl-Paulsen, E., and Totland, G.K., 2003. Hatchability of eggs from Atlantic cod, turbotand Atlantic halibut after disinfection with ozoneatedseawater. Aquaculture.221(1-4): 245 – 254.

Hamasaki, K., 2002. Effects of temperature on the survival, spawning and egg incubation period of over wintering mud crab broodstock, Scyllaparamamosain(Brachyura: Portunidae). Aquaculture Science. 50(3): 301 – 308.

Kvingedal, R., Owens, L., and Jerry, D.R., 2006. A new parasite that infects eggs of the mud crab, Scylla serrata, in Australia. Journal InvertebrPathol. 93(1): 54 - 59.

Li, S., Zeng, C., Tang, H., Li, F., Wang, G., Cheng, Y., and Lin, Q., 1999. Investigations into the reproductive and larval culture biology of the mud crab, Scyllaparamamosain: a research overview. In:C.P. Keenan and A.W. Blackshaw(Eds.). 1999. Mud crab Aquaculture and Biology. ACIAR proceedingsNo. 78. Watson Ferguson and Company, Brisbane, Australia: 121 - 124.

Li, S., Zhang, Z., Li, C., Zhou, L., Liu, W., Li, Y., and Wen, X., 2012. Molecular cloning and expression profiles of nitric oxide synthase (NOS) in mud crab Scylla paramamosain. Fish and Shellfish Immunology. 32(4): 503–512.

Liltved, H.,Vogelsang, C.,Modahl, I.,and Dannevig,B.H.,2006. High resistance of fish pathogenic viruses to UV irradiation and ozoneatedseawater. Aquacultural Engineering. 34(2): 72 - 82.

Leano, E. M., 2002. Haliphthorosspp. from spawned eggs of captive mud crab, Scyllaserrata, broodstocks. Fungal Diversity. 9: 93 - 103.

Mann, D., Asakawa, T., and Blackshaw, A.W., 1999. Performance of mud crab Scylla serrata broodstockheld at Bribie IslandAquaculture Research Centre. In: C.P. Keenan and A.W. Blackshaw(Eds.). 1999. Mud crab Aquaculture and Biology. ACIAR proceedingsNo. 78. Watson Ferguson and Company, Brisbane, Australia: 101 - 106.

Mezhoud, H., Chantziaras, I., Iguer-Ouada, M., Moula, N., A. Garmyn., A. Martel., and Boyen, F., 2016. Presence of antimicrobial resistance in coliform bacteria from hatching broiler eggs with emphasis on ESBL/AmpCproducing bacteria. Avian Pathology. 45(4): 493–500.

Millamena, O.M., and Quinitio, E.T., 2000. The effects of diets on the reproductive performance of eyestalk ablated and intact mud crab Scylla serrata. Aquaculture. 181(1-2): 81-90.

Naylor, J.K., Taylor, E.W., and Bennett, D.B., 1999. Oxygen uptake of developing eggs ofCancer pagurus(Crustacea: Decapoda: Cancridae) and consequent behavior of the ovigerous females. Journal of the Marine Biological Association of the United Kingdom. 79(2): 305-315.

Nghia, T.T., Wille, M., Binh, T.P., Thanh, H.P., Danh, N.V., and Sorgeloos, P., 2007. Improved techniques for rearing mud crab Scylla paramamosain(Estampador1949) larvae. Aquaculture Research. 38(14): 1539 – 1553.

Nyqvist, D., 2011. Impact of crab-seed collection for aquaculture on juvenile mud-crab (Scylla serrata) populations at Mafia Island, Tanzania. University of Gothenburg. University of Gothenburg.

Phạm Văn Quyết và Trương Trọng Nghĩa, 2010. Đặc điểm sinh sản của cua biển Scylla paramamosaintự nhiên và nuôi trong ao. Tạp chí khoa học trường Đại học Cần Thơ.16a: 90 – 96.

Quinitio, E.T., Parado-Estepa, F.D., Millamena, O.M., Rodríguez, E.,and Borlongan,E.,2001. Seed production of mud crab Scyllaserratajuveniles. Asian Fisheries Science. 14(2): 161 - 174.

Samuel, N.J., and Soundarapandian, P., 2010. Embryology ofcommercially important portunidcrab Scylla serrata (Forskal). Current ResearchJournal of Biological Sciences, 2(1): 35-37.

Summerfelt, S.T., Sharrer, M.J., Tsukuda, S.M., and Gearhart, M., 2009. Process requirements for achieving full-flowdisinfectionof recirculatingwaterusing ozoneationand UV irradiation. Aquaculture Engineering. 40(1): 17 – 27.

Summerfelt, S.T., and Hochheimer, J.N., 1997. Review of ozone processes and applications as an oxidizing agent in aquaculture. Progressive Fish-Culturist. 59(2): 94 - 105.

Sellars, M.J., Coman, G.J., and Morehead, D.T., 2005. Tolerance of Penaeus japonicus embryosto ozoneedisinfection. Aquaculture. 245(1-4): 111 – 119.

Talpur, A.D., Memon, A.J., Khan, M.I.,Ikhwanuddin, M., Danish Daniel, M.M., andAbolMunafi, A.B., 2011. Pathogenicity and antibioticsensitivity of pathogenic flora associated with thegut of blue swimming crab, Portunuspelagicus(Linnaeus, 1758). Journal of Animal and Veterinary Advances. 10(16): 2106-2119.

Tạ Văn Phương, 2006. Ứng dụng ozonxửlý nước và vi khuẩn Vibrio spp. trong bể ương ấu trùng tôm sú. Tạp chí Khoa học Trường Đại học Cần Thơ. (Số đặc biệt): 25 – 33.

Von Gunten, U., 2003. Ozoneationof drinking water: Part I. Oxidation kinetics and product formation. Water Research. 37(7): 1443 - 1467.

Walton, M.E.M., Le Vay, L., Lebata, J.H., and Binas, J., 2006. Seasonal abundance, distributionand recruitment of mud crabs (Scylla spp.) in replanted mangroves. Estuarine, Coastal and Shelf Science. 66(3-4): 493 – 500.

Wu, Q., Wang, S., You, C., and Li, Y., 2016. Immune response of mud crab, Scylla Paramamosain, to Bacterial Lipopolysaccharide. Journal of the World Aquaculture Society. 47(6): 843–853.

Zhang, Y., Li, Y., and Sun, X. L., 2011. Antibiotic resistance of bacteria isolated from shrimp hatcheries and cultural ponds on DonghaiIsland, China. Marine Pollution Bulletin. 62(11): 2299–2307.