Khảo sát hàm lượng polyphenol, flavonoid, hoạt tính chống oxy hóa và khả năng ức chế α-glucosidase của trà Longi (Camellia longii Orel & Luu)
,
,
,
,
và
*
Article Sidebar
Full Text: 
PDF
Abstract
Camellia longii, an endemic species of Vietnam, remains poorly investigated in terms of its biological potential. This study aimed to evaluate the total phenolic content (TPC), total flavonoid content (TFC), antioxidant activity, and α-glucosidase inhibitory activity of leaf and flower extracts of C. longii. The extracts exhibited high TPC values ranging from 324.89 ± 6.74 to 482.00 ± 8.82 mg GAE/g extract and TFC values ranging from 42.31 ± 0.68 to 48.07 ± 1.80 mg QE/g extract. The extracts exhibited strong antioxidant activity, with DPPH radical-scavenging IC50 values ranging from 13.20 ± 0.35 to 17.91 ± 0.22 µg/mL and ABTS radical-scavenging IC50 values ranging from 54.12 ± 0.77 to 60.80 ± 1.74 µg/mL. In addition, the extracts exhibited potent α-glucosidase inhibitory activity, with IC50 values ranging from 29.80 ± 0.15 to 37.99 ± 0.24 µg/mL. These findings provide the first scientific evidence supporting the potential of C. longii as a promising natural source for the development of antioxidant and blood glucose-regulating products.
Tóm tắt
Trà Longi (Camellia longii) là loài thực vật đặc hữu của Việt Nam nhưng vẫn chưa được nghiên cứu đầy đủ về tiềm năng sinh học. Nghiên cứu này nhằm đánh giá hàm lượng polyphenol (TPC), flavonoid toàn phần (TFC), hoạt tính chống oxy hóa và khả năng ức chế α-glucosidase của các cao chiết từ lá và hoa của Trà Longi. Kết quả cho thấy TPC dao động từ 324,89 ± 6,74 đến 482,00 ± 8,82 mg GAE/g cao chiết, trong khi TFC đạt 42,31 ± 0,68 đến 48,07 ± 1,80 mg QE/g cao chiết. Các cao chiết thể hiện hoạt tính chống oxy hóa mạnh, với giá trị IC50 trong thử nghiệm DPPH từ 13,20 ± 0,35 đến 17,91 ± 0,22 µg/mL và trong thử nghiệm ABTS từ 54,12 ± 0,77 đến 60,80 ± 1,74 µg/mL. Đồng thời, các cao chiết cũng ức chế mạnh α-glucosidase (IC₅₀ = 29,80 ± 0,15–37,99 ± 0,24 µg/mL). Những kết quả này cung cấp cơ sở khoa học ban đầu cho việc khai thác Trà Longi như một nguồn nguyên liệu tiềm năng trong phát triển các sản phẩm hỗ trợ chống oxy hóa và kiểm soát glucose huyết.
Article Details
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License.
Tài liệu tham khảo
Agati, G., Brunetti, C., Di Ferdinando, M., Ferrini, F., Pollastri, S., & Tattini, M. (2013). Functional roles of flavonoids in photoprotection: New evidence, lessons from the past. Plant Physiology and Biochemistry, 72, 35-45. https://doi.org/10.1016/j.plaphy.2013.03.014
Anh Phan, D. T., Tran, H. T., Le, H. P., Khuong, T. H., Ha, H. T., Nguyen, D. T., Nguyen, G. T., Le, M. V., & Ly, T. H. (2024). Exploring the therapeutic potential of Camellia longii Orel & Luu leaf extracts for memory loss in Alzheimer’s disease: Novel findings and functional food applications. ACS Omega, 9(27), 29651-29665.
Arnø, A., Sarmiento, V., Elvebø, O., & Araujo, P. (2025). Critical evaluation and validation of a high-throughput microplate-based cupric reducing antioxidant capacity method for the analysis of fish feed ingredients. Antioxidants, 14(6), 728. https://doi.org/10.3390/antiox14060728
Bệnh viện Nội tiết Trung ương. (2020). Tóm tắt báo cáo nghiên cứu khoa học: Điều tra tỷ lệ đái tháo đường, tiền đái tháo đường và một số yếu tố liên quan tại Việt Nam năm 2020. https://benhviennoitiet.vn/tom-tat-bao-cao-nghien-cuu-khoa-hoc-dieu-tra-ty-le-dai-thao-duong-tien-dai-thao-duong-va-mot-so-yeu-to-lien-quan-tai-viet-nam-nam-2020/
Bolat, E., Sarıtaş, S., Duman, H., Eker, F., Akdaşçi, E., Karav, S., & Witkowska, A. M. (2024). Polyphenols: secondary metabolites with a biological impression. Nutrients, 16(15), 2550. https://doi.org/10.3390/nu16152550
Currya, A. S. (2022). Threats to golden-flowered camellias along Hon Giao Pass. Dalat University Journal of Science, 12(3), 80–116. https://doi.org/10.37569/DalatUniversity.12.3.978(2022)
Chanda, S., & Dave, R. (2009). In vitro models for antioxidant activity evaluation and some medicinal plants possessing antioxidant properties: An overview. African Journal of Microbiology Research, 3(13), 981-996.
Chandimali, N., Bak, S. G., Park, E. H., Lim, H. J., Won, Y. S., Kim, E. K., Park, S. I. & Lee, S. J. (2025). Free radicals and their impact on health and antioxidant defenses: A review. Cell Death Discovery, 11(1), 19. https://doi.org/10.1038/s41420-024-02278-8
Chen, X., Xie, N., Feng, L., Huang, Y., Wu, Y., Zhu, H., Tang, J., & Zhang, Y. (2025). Oxidative stress in diabetes mellitus and its complications: From pathophysiology to therapeutic strategies. Chinese Medical Journal, 138(1), 15-27. https://doi.org/10.1097/CM9.0000000000003230
Di Meo, S., Reed, T. T., Venditti, P., & Victor, V. M. (2016). Role of ROS and RNS sources in physiological and pathological conditions. Oxidative Medicine and Cellular Longevity, 2016(1), 1245049. https://doi.org/10.1155/2016/1245049
Diabetes Care (2026). 2. Diagnosis and Classification of Diabetes: Standards of Care in Diabetes-2026. Diabetes Care, 49(Suppl. 1), S27–S49. https://doi.org/10.2337/dc26-S002
Dung, H. N. T., Thảo, N. T., Nguyệt, C. T. M., Bằng, N. T. K., Huỳnh, N. T. N., Thảo, L. P. N., & Quý, N. P. (2025). Nghiên cứu hàm lượng polyphenol, flavonoid và hoạt tính kháng oxy hóa, ức chế α-glucosidase của cao chiết từ cây sao nhái tím (Cosmos bipinnatus) trồng ở Cần Thơ. Tạp chí Khoa học Đại học Cần Thơ, 61(2), 126-133. https://doi.org/10.22144/ctujos.2025.031
Dzigbor, A., Neglo, D., Dzah, C. S., & Sraha, R. (2025). Total phenolic content, phytochemical screening, antioxidant and antimicrobial activities of Borassus flabellifer and Borassus aethiopum fruits. Food Chemistry Advances, 7, 100937.
https://doi.org/10.1016/j.focha.2025.100937
Fatmawati, S., Auwaliyah, F., Yuliana, Hasanah, N., Putri, D. A., Kainama, H., & Choudhary, M. I. (2023). Antioxidant and α-glucosidase inhibitory activities of compound isolated from Stachytarpheta jamaicensis (L) Vahl. leaves. Scientific Reports, 13(1), 18597. https://doi.org/10.1038/s41598-023-45357-z
Floegel, A., Kim, D.-O., Chung, S.-J., Koo, S. I., & Chun, O. K. (2011). Comparison of ABTS/DPPH assays to measure antioxidant capacity in popular antioxidant-rich US foods. Journal of Food Composition and Analysis, 24(7), 1043-1048. https://doi.org/10.1016/j.jfca.2011.01.008
Genitsaridi, I., Salpea, P., Salim, A., Sajjadi, S. F., Tomic, D., James, S., Thirunavukkarasu, S., Issaka, A., Chen, L., Basit, A., Luk, A. O. Y., Ma, R. C. W. M., Mbanya, J. C., Ramachandran, A., Wild, S. H., Duncan, B. B., Boyko, E. J., & Magliano, D. J. (2026). 11th edition of the IDF Diabetes Atlas: global, regional, and national diabetes prevalence estimates for 2024 and projections for 2050. The Lancet Diabetes & Endocrinology, 14(2), 149-156.
Hạ, L. H. H., Trĩnh, T. T., Thư, Đ. T. A., & Khôi, L. H. (2024). Đánh giá hoạt tính ức chế α-glucosidase của một số dược liệu trên mô hình in-vitro. Tạp chí Khoa học Trường Đại học Quốc tế Hồng Bàng, 27(1), 107-114. https://doi.org/10.59294/HIUJS.27.2024.568
Kandylis, P. (2022). Phytochemicals and Antioxidant Properties of Edible Flowers. Applied Sciences, 12(19), 9937. https://doi.org/10.3390/app12199937.
Kashtoh, H., & Baek, K. H. (2022). Recent updates on phytoconstituent alpha-glucosidase inhibitors: an approach towards the treatment of type two diabetes. Plants, 11(20), 2722. https://doi.org/10.3390/plants11202722
Kumar, S., Narwal, S., Kumar, V., Prakash, O. (2011). α-Glucosidase inhibitors from plants: A natural approach to treat diabetes. Pharmacognosy Reviews, 5(9), 19-29. https://doi.org/10.4103/0973-7847.79096.
Lankatillake, C., Luo, S., Flavel, M., Lenon, G. B., Gill, H., Huynh, T., & Dias, D. A. (2021). Screening natural product extracts for potential enzyme inhibitors: Protocols, and the standardisation of the usage of blanks in α-amylase, α-glucosidase and lipase assays. Plant Methods, 17(1), 3. https://doi.org/10.1186/s13007-020-00702-5
Leopoldini, M., Russo, N., & Toscano, M. (2011). The molecular basis of working mechanism of natural polyphenolic antioxidants. Food Chemistry, 125(2), 288-306. https://doi.org/10.1016/j.foodchem.2010.08.012
Ma, D., Guo, Y., Ali, I., Lin, J., Xu, Y., & Yang, M. (2024). Accumulation characteristics of plant flavonoids and effects of cultivation measures on their biosynthesis: A review. Plant Physiology and Biochemistry, 215, 108960. https://doi.org/10.1016/j.plaphy.2024.108960.
Magliano, D. J., Boyko, E. J., & Atlas, D. (2025). 1. What is diabetes?. In Magliano, D. J., & Boyko, E. J. (Eds.), Diabetes Atlas (pp. 12-22). International Diabetes Federation.
Mai, T. T., Thu, N. N., Tien, P. G., & Van Chuyen, N. (2007). Alpha-glucosidase inhibitory and antioxidant activities of Vietnamese edible plants and their relationships with polyphenol contents. Journal of Nutritional Science and Vitaminology, 53(3), 267-276. https://doi.org/10.3177/jnsv.53.267
Marino, B. A., Antonio, C., & Manuel, A. (2001). The hydrophilic and lipophilic contribution to total antioxidant activity. Food Chemistry, 73, 239-244. https://doi.org/10.1016/S0308-8146(00)00324-1
My, N. H. T., Thuy, N. H. L., Khuyen, V. T. K., & Tuan, N. D. (2026). Phytochemical characterization and biological evaluation of Camellia hakodae Ninh flowers. Molecules, 31(7), 1088. https://doi.org/10.3390/molecules31071088
Nhan, T. T. T., Vuong, T. B., Nha, P. T. T., Wook, U. S., Thuong, N. T. L., & Van Canh, N. (2025). Camellia section Piquetia: Description of two new species from southern Vietnam. Dalat University Journal of Science, 16(2), 3–1
Orel, G., Wilson, P. G., & Hong Truong, L. (2014). Camellia curryana and C. longii spp. nov. (Theaceae) from Vietnam. Nordic Journal of Botany, 32(1), 42-50.
https://doi.org/10.1111/j.1756-1051.2013.00399.x
Platzer, M., Kiese, S., Herfellner, T., Schweiggert-Weisz, U., Miesbauer, O., & Eisner, P. (2021). Common trends and differences in antioxidant activity analysis of phenolic substances using single electron transfer based assays. Molecules, 26(5), 1244. https://doi.org/10.3390/molecules26051244
POWO. (2025). Camellia L., Plants of the World Online. Facilitated by the Royal Botanic Gardens, Kew. https://powo.science.kew.org/
Roobab, U., Aadil, R. M., Kurup, S. S., & Maqsood, S. (2025). Comparative evaluation of ultrasound-assisted extraction with other green extraction methods for sustainable recycling and processing of date palm bioresources and by-products: A review of recent research. Ultrasonics Sonochemistry, 114, 107252. https://doi.org/10.1016/j.ultsonch.2025.107252
Sari, K. R. P., Ikawati, Z., Danarti, R., & Hertiani, T. (2023). Micro-titer plate assay for measurement of total phenolic and total flavonoid contents in medicinal plant extracts. Arabian Journal of Chemistry, 16(9), 105003. https://doi.org/10.1016/j.arabjc.2023.105003
Schaich, K. M., Tian, X., & Xie, J. (2015). Hurdles and pitfalls in measuring antioxidant efficacy: A critical evaluation of ABTS, DPPH, and ORAC assays. Journal of Functional Foods, 14, 111-125.
https://doi.org/10.1016/j.jff.2015.01.043
Shahidi, F., & Samarasinghe, A. (2025). How to assess antioxidant activity? Advances, limitations, and applications of in vitro, in vivo, and ex vivo approaches. Food Production, Processing and Nutrition, 7(1), 50. https://doi.org/10.1186/s43014-025-00326-z
Sun, L., Song, Y., Chen, Y., Ma, Y., Fu, M. & Liu, X. (2021). The galloyl moiety enhances the inhibitory activity of catechins and theaflavins against α-glucosidase by increasing the polyphenol–enzyme binding interactions. Food & Function, 12(1), 215–229. https://doi.org/10.1039/D0FO02689A.
Švestková, P., Balík, J., & Soural, I. (2024). Synergistic effect of selected carboxylic acids and phenolic compounds detected by the FRAP method. Food Chemistry: X, 23, 101573.
https://doi.org/10.1016/j.fochx.2024.101573
Teixeira, A. M., & Sousa, C. (2021). A review on the biological activity of Camellia species. Molecules, 26(8), 2178. https://doi.org/10.3390/molecules26082178
Tran-Trung, H., Nguyen, T. C., Dung, V. C., Ngoc, H. N., Nguyen, D. K., Vu, D. C., Van, S. D., Nguyen, Q. A. T., Nguyen, T. H. D., Tham, V. M., & Dau, X. D. (2023). Characterization and evaluation of the in vitro antioxidant, α-glucosidase inhibitory activities of Camellia longii Orel and Luu. (Theaceae) flower essential oil and extracts from Vietnam. Natural Product Communications, 18(11), 1-8.
https://doi.org/10.1177/1934578X231208348
Trâm, Đ. T. Q., & Quốc, P. T. (2024). Nghiên cứu tác dụng chống oxy hóa và khả năng ức chế enzyme α-glucosidase in vitro của lá Sauropus androgynus (L.) Merr. Tạp chí Khoa học và Công nghệ - Đại học Đà Nẵng, 22(7), 73-76.
Triều, L. H., Anh, V. T., Phong, N. V. H., Sa, P. T. M., Thảo, L. B., Lên, N. H., & Minh, L. V. (2019). Khảo sát thành phần hóa học, hoạt tính kháng oxy hóa và độc tính cấp đường uống của cao chiết từ vỏ quả lựu (Punica granatum L.). Tạp chí Y Dược học, 9(04), 7-14. https://doi.org/10.34071/jmp.2019.4.1
Vu, D. C., Nguyen, T. H., Tran-Trung, H., Tuan, N. H., & Nguyet, N. T. (2024). Comparative analysis of pigments, phenolics, and bioactivities of three Camellia species growing in Vietnam. Natural Product Communications, 19(4), 1934578X241249090.
https://doi.org/10.1177/1934578X241249090
Yin, Z., Zhang, W., Feng, F., Zhang, Y., & Kang, W. (2014). α-Glucosidase inhibitors isolated from medicinal plants. Food Science and Human Wellness, 3(3-4), 136-174. https://doi.org/10.1016/j.fshw.2014.11.003
Zhu, J., Chen, C., Zhang, B., & Huang, Q. (2020). The inhibitory effects of flavonoids on α-amylase and α-glucosidase. Critical Reviews in Food Science and Nutrition, 60(4), 695-708. https://doi.org/10.1080/10408398.2018.1548428
Zhu, Z., Zhong, B., Yang, Z., Zhao, W., Shi, L., Aziz, A., Rauf, A., Aljohani, A. S. M., Alhumaydhi, F. A., & Suleria, H. A. R. (2022). LC-ESI-QTOF-MS/MS characterization and estimation of the antioxidant potential of phenolic compounds from different parts of the Lotus (Nelumbo nucifera) seed and rhizome. ACS Omega, 7(17), 14630-14642.
https://doi.org/10.1021/acsomega.1c0701
Zhang, Y., Wu, F., He, Z., Fang, X., & Liu, X. (2023). Optimization and molecular mechanism of novel α-glucosidase inhibitory peptides derived from Camellia seed cake through enzymatic hydrolysis. Foods, 12(2), 393. https://doi.org/10.3390/foods12020393