Nhân nhanh In vitro cây công chúa hồng (Philodendron erubescens Pink Princess)
,
,
,
,
,
và
*
Abstract
The study on the in vitro propagation of Philodendron erubescens Pink Princess was conducted to determine the optimal concentrations of plant growth regulators for propagation. The research employed in vitro tissue culture methods using MS medium supplemented with growth regulators such as Kinetin, NAA, and activated charcoal. Three main experiments were performed: (1) the effect of Kinetin on the shoot multiplication stage, (2) the effects of NAA and activated charcoal on root formation, and (3) the survival rate of in vitro plants during acclimatization as well. The results showed that: (i) MS medium supplemented with 1.0 mg/L Kinetin produced an average of 6.07 shoots and 22.6 leaves after 8 weeks of culture, (ii) MS medium with 1.0 g/L activated charcoal achieved a 100% rooting rate after 4 weeks of culture, (iii) in vitro plants reached a high survival rate (100%) and showed strong growth in the greenhouse.
Tóm tắt
Nhân nhanh in vitro cây công chúa hồng (Philodendron erubescens Pink Princess) được thực hiện nhằm xác định nồng độ chất điều hòa sinh trưởng phù hợp cho việc nhân giống loài cây này. Trong nghiên cứu, phương pháp nuôi cấy in vitro được sử dụng, với môi trường MS bổ sung các chất điều hòa sinh trưởng như Kinetin, NAA và than hoạt tính. Ba thí nghiệm chính gồm: (1) tác động của Kinetin lên sự nhân chồi; (2) hiệu quả của NAA và than hoạt tính lên sự tạo rễ; (3) khả năng sống của cây trong điều kiện thuần dưỡng. Kết quả cho thấy: (i) môi trường MS bổ sung Kinetin 1,0 mg/L cho số chồi trung bình là 6,07 và 22,6 lá sau 8 tuần, (ii) MS có than hoạt tính 1,0 g/L đạt tỉ lệ tạo rễ 100% sau 4 tuần, (iii) cây in vitro đạt tỉ lệ sống 100% và phát triển tốt trong nhà lưới.
Article Details
This work is licensed under a Creative Commons Attribution-NonCommercial 4.0 International License.
Tài liệu tham khảo
Alawaadh, A. A., Dewir, Y. H., Alwihibi, M. S., Aldubai, A. A., El-Hendawy, S., & Naidoo, Y. (2020). Micropropagation of lacy tree philodendron (Philodendron bipinnatifidum Schott ex Endl.). HortScience, 55(3), 294-299. https://doi.org/10.21273/HORTSCI14612-19
Ây, N. V., Bé, L. V., & Mến, T. T. (2019). Nuôi cấy mô: Nguyên lý và thực hành. Nhà xuất bản Đại học Cần Thơ.
Chen, F. C., Wang, C. Y., & Fang, J. Y. (2012). Micropropagation of self- heading Philodendron via direct shoot regeneration. Scientia Horticulturae, 141, 23-29.
https://doi.org/10.1016/j.scienta.2012.04.011
Gangopadhyay, G., Bandyopadhyay, T., Gangopadhyay, S. B., & Mukherjee, K. K. (2004). Luffa sponge–a unique matrix for tissue culture of Philodendron. Current Science, 86(2), 315-319.
Hartman, R. D. (1974). Dasheen mosaic virus and other phytopathogens eliminated from caladium, taro, and cocoyam by culture of shoot tips. Phytopathology, 64(2), 237-240. https://doi.org/10.1094/Phyto-64-237
Hằng, P. T. T., Hải, N. T., Linh, N. T. T., Thủy, N. T., Tâm, Đ. T. T., & Thảo, N. T. P. (2025). Nhân nhanh in vitro cây trầu bà cánh phượng (Philodendron xanadu). Tạp chí Khoa học Nông nghiệp Việt Nam, 11(6), 826–832. https://doi.org/10.31817/tckhnnvn.2013.11.6.
Hernandez, M., De La O, R., Castillo, C., Gallardo, M., Hernandez, J., Guzman, B., & Zarate, M. (2024). Micropropagation and phytopathology of calla lily (Zantedeschia spp.). Revista Colombiana de Ciencias Hortícolas, 18(2), e17623.
https://doi.org/10.17584/rcch.2024v18i2.17623
Jirakiattikul, Y., & Limpradithtanont, P. (2006). Shoot multiplication and rooting of Philodendron xanadu cultured in vitro. Songklanakarin Journal of Science and Technology, 28(1), 79-86.
Kang, I., & Sivanesan, I. (2025). Micropropagation of Philodendron ‘White Knight’ via shoot regeneration from petiole explants. Plants, 14(11),1714.
https://doi.org/10.3390/plants14111714
Mehbub, H., Akter, A., Akter, M. A., Mandal, M. S. H., Hoque, M. A., Tuleja, M., & Mehraj, H. (2022). Tissue culture in ornamentals: cultivation factors, propagation techniques, and its application. Plants, 11(23), 3208.
https://doi.org/10.3390/plants11233208
Murashige, T., & Skoog, F. (1962). A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures. Plant Physiology, 15, 473-497.
https://doi.org/10.1111/j.1399-3054.1962.tb08052.x
Phương, L. N. (2009). Giáo trình Nhân giống vô tính thực vật. Nhà xuất bản Đại học Cần Thơ.
Quynh, T. N., & Uyen. V. N. (1987). Aroids propagation by tissue culture: I. Shoot tip culture and propagation of Xanthosoma violaceum. HortScience, 22(4), 671-672. https://doi.org/10.21273/HORTSCI.22.4.671
Sreekumar, S., Mukunthakumar, S., & Seeni, S. (2001). Morphogenetic responses of six Philodendron cultivars in vitro. Indian Journal of Experimental Biology (IJEB), 39(12), 1280 - 1287.
https://doi.org/10.1016/j.biotechadv.2008.08.003
Sun, X., Wang, X., Subedi, B. S., Jiang, Y., Wang, D., Gou, R., Zhang, G., Xu, W., & Zunzheng Wei, Z. (2023). Tissue culture of Calla Lily (Zantedeschia spreng.): An updated review on the present scenario and future prospects. Phyton-International Journal of Experimental Botany, 92(8), 2413-2428. https://doi.org/10.32604/phyton.2023.029667
Thomas, T. D. (2008). The role of activated charcoal in plant tissue culture. Biotechnology Advances, 26(6), 618-631. https://doi.org/10.1016/j.biotechadv.2008.08.003
Wang, X., Li, Y., Nie, Q., Li, J., Chen, J., & Henny, R. J. (2007). In vitro culture of Epipremnum aureum, Syngonium podophyllum, and Lonicera macranthodes, three important medicinal plants. Acta Horticulturae, 756, 155-162. https://doi.org/10.17660/ActaHortic.2007.756.17