NGHIÊN CỨU THUỐC KHÁNG NẤM VÀ HÓA CHẤT KHÁNG VI NẤM PLECTOSPORIUM ORATOSQUILLAE VÀ ACREMONIUM SP. TRONG PHÒNG THÍ NGHIỆM

Phạm Minh Đức * và Trần Ngọc Tuấn

* Tác giả liên hệ (pmduc@ctu.edu.vn)

Article Sidebar

Full Text: PDF

Ngày nhận bài: 20-04-2021
Ngày duyệt đăng: 03-06-2022
Ngày xuất bản: 01-05-2011
Title:
Lượt xem
128
Downloads
79
Trích dẫn
Đức, P. M., & Tuấn, T. N. (2011). NGHIÊN CỨU THUỐC KHÁNG NẤM VÀ HÓA CHẤT KHÁNG VI NẤM PLECTOSPORIUM ORATOSQUILLAE VÀ ACREMONIUM SP. TRONG PHÒNG THÍ NGHIỆM. Tạp chí Khoa học Đại học Cần Thơ, (19b), 20-29. Truy vấn từ https://ctujsvn.ctu.edu.vn/index.php/ctujsvn/article/view/1065
Số báo
Số. 19b (2011)
Chuyên mục
Công nghệ

Abstract

In vitro activities of Bronopol (B), hydrogen peroxide (HP), Formalin (F) and Sodium Hypochlorite (SH) against hyphal growth and conidia of P. oratosquillae NJM0662 and Acremonium sp. NJM0672 were examined. As a result, hyphal growth of the isolates NJM0662 and NJM0672 were strongly resistant to SH, and the MICs were 800 and 1600 ppm, respectively. The MICs of B, F and HP against hyphal growth and conidia of both isolates were 50, 200 and 400 ppm, respectively. MFCs of B, F and HP against hyphal growth and conidia of the isolate NJM0662 were 50, 150 and 400 and 50, 200 and 800 ppm, respectively, when exposed to the chemicals for 24h. While MFCs of B, F and HP on hyphal growth and conidia of the isolate NJM0672 were 50, 150 and 300 and 800, 400 and >1600 ppm, when exposed for 24h, respectively. As a result, it was concluded that B and HP were effective chemicals in this study. On the other hand, in vitro antifungal activities of fluconazole, amphotericin B, 5-fluorocytocine, terbinafine hydrochloride, micafungi, voriconazole, miconazole and itraconazole against these species showed that amphotericin B, voriconazole and terbinafine hydrochloride were effective both the isolates.
Keywords: antifungal agents, chemicals, P. oratosquillae

Tóm tắt

Nghiên cứu mức độ tác động của bronopol, oxy già, formol và sodium hypochlorite đến khả năng phát triển của sợi nấm và bào tử của hai chủng nấm P. oratosquillae NJM0662 and Acremonium sp. NJM0672 được thực hiện trong điều kiện phòng thí nghiệm. Kết quả cho thấy hai chủng NJM0662 và NJM0672 kháng lại với sodium hypoclorite thể hiện ở nồng độ ức chế tối thiểu lần lượt là 800 và 1600 ppm. Nồng độ ức chế tối thiểu của bronopol, formol và oxy già với sợi nấm và bào tử của cả hai chủng lần lượt là 50, 200 và 400 ppm. Nồng độ kháng nấm tối thiểu của bronopol, formol và oxy già với sự phát triển của sợi nấm và bào tử của chủng NJM0662 lần lượt là 50, 150 và 400 và 50, 200 và 800 ppm, sau khi tiếp xúc 24 giờ. Trong khi đó, nồng độ kháng nấm tối thiểu của bronopol, formol và oxy già với sự phát triển của sợi nấm và bào tử của chủng NJM0672 lần lượt là 50, 150 và 300 và 800, 400 và >1600 ppm sau khi tiếp xúc 24 giờ. Như vậy, bronopol và oxy già là hai hóa chất hiệu quả. Mặt khác, tính nhạy của 8 loại thuốc kháng nấm fluconazole, amphotericin B, 5-fluorocytocine, terbinafine hydrochloride, micafungi, voriconazole, miconazole and itraconazole với hai chủng nấm này được thực hiện, kết quả cho thấy amphotericin B, voriconazole và terbinafine hydrochloride hiệu quả với cả hai chủng nấm thí nghiệm.
Từ khóa: Acremonium sp., hóa chất, P. oratosquillae, thuốc kháng nấm

Article Details

Tài liệu tham khảo

Branson, E., 2002. Efficacy of bronopol against infection of rainbow trout (Oncorhynchus mykiss) with the fungus Saprolegnia species. The Veterinary Record 151:539-541.

Dawson, V.K., J.J. Rach and T.M. Schreier, 1994. Hydrogen peroxide as a fungicide for fish culture. Bull. Aquacul. Assoc. Canada 2:54-56.

Duc, P. M., K. Hatai, O. Kurata, K. Tensha, U. Yoshitaka, T. Yaguchi, S.I. Udagawa, 2009. Fungal infection of mantis shrimp, Oratosquilla oratoria caused by two anamorphic fungi found in Japan. Mycopathologia 167:229-247.

Espinel-Ingroff, A., 2001. In vitro fungicidal activities of voriconazole, itrconazole, and amphotericin B against opportunistic moniliaceous and dematiaceous fungi. Journal of clinical microbiology 4:954-958.

Ghomi, M.R., A. Esmaili, G. Vossoughi, A. Keyva and R.M. Nazari, 2007. Comparison of ozone, hydrogen peroxide and removal of infected eggs for prevention of fungal infection in sturgeon hatchery. Fisheries Science 73:1332-1337.

Jørgensen, T.R. and K. Buchmann, 2007. Stress response in rainbow trout during infection with Ichthyophirius multifiliis and formalin bath treatment. Acta Ichthyologia et Piscatoria 37:25-28.

Kamai, Y., T. Harasaki, T. Fukuoka, S. Ohya, K. Uchida, H. Yamaguchi and S. Kuwahara, 2002. In vitro and in vivo activities of CS-758 (R-120758), a New Triazole antifungal agent. Antimicrobial agents and chemotherapy 3:367-370.

Khoa, L.V., 2005. Studies on Fusarium injection of cultured prawn in Vietnam and Japan. Dissertation submitted to Nippon Veterinary and Life Science University in partial fulfillment of the Degree of Doctor of Philosophy. 169 pp.

Khodabandeh, S. and B. Abtahi, 2006. Effects of sodium chloride, formalin and iodine on the hatching success of common carp, Cyprinus carpio, eggs. Journal Apply Ichthyology 22:54-56.

Kitancharoen, N., A. Yamamoto and K. Hatai, 1997. Fungicidal effect of hydrogen peroxide on fungal infection rainbow trout eegs. Mycoscience 38:375-378.

Kitancharoen, N., A. Yamamoto and K. Hatai, 1998. Effects of sodium chlorite, hydrogen peroxide and malachite green on fungal infection in Rainbow trout eggs. Biocontrol Science 3:113-115.

Kobayashi, G.S. and G. Medoff, 1983. Measurement of activity of antifungal drugs. In: Fungi pathogenic for humans and animals. Part B: Pathogenicity and detection: I. Howard, D. H. (ed.). Marcel Dekker, Inc. New York, USA. pp. 357-372.

Koga, H., Y. Tsuji, K. Inoue, K. Kanai, T. Majima, T. Kasai, K. Uchida and H. Yamaguchi, 2006. In vitro antifungal activity of luliconazole against clinical isolates from patients with dermatomycoses. J. Infect. Chemother 12:163-165.

Makimura, K., T. Suzuki, T. Tamura, M. Ikedo, R. Hanazawa, Y. Takahashi, Y. Yamada, K. Uchida and H. Yamaguchi, 2004. Comparative evaluation of standard dilution method and commercial Kit for frozen plate antifungal susceptability testing of yeasts using 200 clinical isolates. Microbiol. Imminol., 48:747-753.

Manavathu, E., U. Nune, K. Kanuri, P.H. Chandrasekar and O.C. Abraham, 2000. Effect of test medium on vi tro susceptibility testing results for Aspergillus fumigatus. Rev. Iberoam. Mico.17:107-110.

McGinnis, M.R. and L. Pasarell, 1998. In vitro testing of susceptibilities of filamentous ascomycetes to virionazole, itrconazole, and amphoterincin B, with consideration of phylogenetic implications. Journal of clinical microbiology 3:2353-2355.

Oono, H. and K. Hatai, 2007. Antifungal activities of bronopol and 2-methyl-4-isothiazolin-3-one (MT) against Saprolegnia. Biocontrol science 12:145-148.

Oono, H., K. Hatai, H. Aikawa and H. Hara, 2008. The use of bronopol to control fungal infection in Ayu eggs. Aquaculture Science 56:9-12.

Oono, H., K. Hatai, M. Miura, N. Tuchida and T. Kiryu, 2007. The use of bronopol to control fungal infection in rainbow trout eggs. Biocontrol science 12:55-57.

Pfaller, M.A., V. Chaturvedi, A. Espinel-Inogroff, M.A. Ghanoum, L.L. Gosey, F.C. Odds, J.H. Rex, M.G. Rinaldi, D.J. Dheehan, T.J. Walsh and D.W. Warnock, 2002. Reference method for broth dilution antifungal susceptibility testing of filamentous fungi; Approved standard. M38-A, Vol.22 No.16.

Pottinger, T.G. and J.G. Day, 1999. A Saprolegnia parasitica challenge system for rainbow trout: assessment of Pyceze as an anti-fungal agent for both fish and ova. Dis. Aquat. Org. 36:129-141.

Serena, C., M. Ortoneda, J. Capilla, F.J. Pator, D.A. Sutton, M.C. Rinaldi and J. Guarro, 2003. In vitro activities of new antifungal agents against Chaetomium spp. And inoculum standardization. Antimicrobial agents and chemotherapy. 4:3161-3164.

Thorburn, M.A. and R.D. Moccia, 1993. Use of chemotherapeutics on trout farm in Ontario. Journal of Aquatic Animal health. 5:85-91.

Vitale, R.G., J. Afeltra, G.S. de Hoog, A.J. Rijs and P.E. Verweij, 2003. In vitro activity of amphoterincin B and itraconazone in combination with flucytosine, sulfadiazine and quinolones against Exophiala spinifera. Journal of Antimicrobial Chemotherrapy 51:1297-2300.

Willoughby, L.G. and R.J.W. Roberts, 1992. Towards strategic use of fungicides against Saprolegnia parasitica in salmonid fish hatcheries. J. Fish Dis. 15:1-13.