Lê Hồng Giang * Nguyễn Bảo Toàn

* Tác giả liên hệ (lhgiang@ctu.edu.vn)

Abstract

Dischidia rafflesiana Wall. is a medicinal plant of Asclepiadaceae subfamily (Apocynaceace family). In vitro propagation of Dischidia rafflesiana Wall. was conducted through calli, somatic embryos and plantlets. Two experiments were carried out on plant growth regulators auxin and cytokinin. The results showed that induction of calli from young stem segments achieved 100% on MS medium (Murashige và Skoog, 1962) supplemented with 2,4-D 0.5, 1, and 1.5 mg/l in combination with 1 mg/l BA after 30 days cultured. Transfer of these calli to MS medium added with NAA and BA resulted in successful somatic embryogenesis. Plantlet formation observed on MS medium supplemented with 2 mg/l BA and NAA 0.05 mg/l and 0.1 mg/l, at rate of 12.5% and 25% respectively.
Keywords: in vitro propagation, calli, somatic embryo, plantlet

Tóm tắt

Cây Mỏ Quạ (Dischidia rafflesiana Wall.) là loài cây thảo dược thuộc họ phụ Bông tai (Asclepiadoidaceae), họ Apocynaceace Nhân giống in vitro cây Mỏ Quạ được tiến hành thông qua sự hình thành mô sẹo, phôi vô tính và cây con. Hai thí nghiệm được thực hiện trên auxin và cytokinin. Kết quả nghiên cứu đã đạt được sự hình thành mô sẹo từ đoạn thân non của cây Mỏ Quạ với tỷ lệ 100% sau 30 ngày nuôi cấy trên môi trường MS (Murashige và Skoog, 1962) bổ sung 2,4-D nồng độ 0,5, 1 và 1,5 mg/l kết hợp BA 1 mg/l. Sau khi chuyển sang môi trường có bổ sung NAA kết hợp với BA, mô sẹo có khả năng phát sinh phôi vô tính. Sự hình thành cây con đạt được trên môi trường MS bổ sung 2 mg/l BA kết hợp với NAA nồng độ 0,05 mg/l và 0,1 mg/l, với tỷ lệ tương ứng là 12,5% và 25% ở 30 ngày sau khi cấy.
Từ khóa: Dischidia rafflesiana Wall., nhân giống in vitro, mô sẹo, phôi vô tính, cây con

Article Details

Tài liệu tham khảo

Đỗ Huy Bích, Đặng Quang Chung, Bùi Xuân Chương, Nguyễn Thượng Dong, Đỗ Trung Đàm, Phạm Văn Hiển, Vũ Ngọc Lộ, Phạm Duy Mai, Phạm Kim Mãn, Đoàn Thị Nhu, Nguyễn Tập, Trần Toàn. 2003. Cây Thuốc Và Động Vật Làm Thuốc ở Việt Nam, tập II, Nhà xuất bản Khoa Học và Kỹ Thuật, Hà Nội.

Gomez, Kwanchai A. and Arturo A. Gomez. 1984. Statistical procedures for agricultural research, 2nd Edition, John Wiley & Sons, Inc., 306-308.

Josue, Jack F. Malamug, Haruhisa Inden and Tadashi Asahira. 1991. Plantlet regeneration and propagation from ginger callus. Scientia Horticulturae, 48(1), 89-97.

Karami, O. 2008. Induction of Embryogenic Callus and Plant Regeneration in Carnation (Dianthus caryophyllus L.). Journal of Biological Sciences, 8(4), 68-72.

Karim MA., Ahmed SU (2010) Somatic embryogenesis and micropropagation in Teasle Gourd. International Journal of Environmental Science and Development, 1(1), 10-14.

Kim, S.W., T.J. Kim and J.R. Liu, 2003. High frequency somatic embryogenesis and plant regeneration in petiole and leaf explant cultures and petiole-derived embryogenic cell suspension cultures of Hylomecon vernalis. Plant Cell Tiss. Organ Curt., 74, 163-167.

Luo, J.P., J.F. Jia, Y.H. Gu and J. Liu, 1999. High frequency somatic embryogenesis and plant regeneration in callus culture of Astragalus adsurgens Pall. Plant Sci., 143, 93-99.

Marchant, R., M.R. Davey, J.A. Lucas and B.G. Power, 1996. Somatic embryogenesis and plant regeneration in Floribunda rose (Rose hybrida L.) Trumpeter and Glad Tidings. Plant Sci., 120, 95-105.

Murashige T. and F. Skoog. 1962. A Revised Medium for Rapid Growth and Bio-assays with Tobaco Tissue Culture. Pthysiologia Plantarum, 15, 473-479.

Rahman MM., Amin MN., Ahamed T., Ali MR., Habib A (2004) Efficient plant regeneration through somatic embryogenesis from leaf base-derived callus of Kaempferia galanga L. Asian Journal of Plant Sciences, 3 (6), 675-678.

Suzuki, S., M. Oota and M. Nakano, 2002. Emberyogenic callus induction from leaf of the Liliaceous ornamental plant Agapanthus praecox spp. orientals leighton histological study and response to selective agents. Sci. Horticut., 95, 123-132.

Yi Tang, Huanxiu Li, Ji Liu, Bin Liu and Hong Ping Luo. 2009. Callus formation from anther culture in balsam pear (Momordica charantia L.). American-Eurasian J. Agric. & Environ. Sci., 6(3), 308-312.