Lê Thị Vĩ Tuyết * , Dương Hoa Xô Nguyễn Thị Thanh Giang

* Tác giả liên hệLê Thị Vĩ Tuyết

Abstract

Bovine preantral follicles (0.5–1 mm diameter) were collected from ovaries of slaughtered cows and cultured in vitro in TCM199 medium with 10% fetal bovine serum (FBS).  Follicles were cultured growing in 4-well plates, coated mineral oil with the three treatments: (1) TCM199, 10% FBS (control); (2) TCM199, 10% FBS, sodium pyruvate (0.1 mg/mL); (3) TCM199, 10% FBS, sodium pyruvate (0.1 mg/mL), estradiol (1 μg/mL), follicle stimulating hormone (FSH 0.02 UI/mL) and lutenizing hormone (LH 0.01 UI/mL). After 18 days of growing, collect oocytes and make it mature within 24 hours. Criteria were assessed by increasing the size of the follicle and the possible formation of the first terminal. The study results show that in vitro cultures early antral follicles (diameter
Keywords: Follicle maturation, folliculogenesis, IVF, IVM

Tóm tắt

Nang noãn bò ở giai đoạn hình thành xoang sớm (đường kính 0,5 -1 mm) được thu nhận từ buồng trứng bò cái bị giết mổ và được nuôi cấy tăng trưởng in vitro trong môi trường TCM199 có 10% huyết thanh bào thai bò (FBS, fetal bovine serum). Các nang noãn sẽ được nuôi tăng trưởng trong đĩa 4 giếng, có phủ dầu khoáng với 3 nghiệm thức: (1) TCM199, 10% FBS (đối chứng); (2) TCM199, 10% FBS, sodium pyruvate (0,1 mg/mL); (3) TCM199, 10% FBS, sodium pyruvate (0,1 mg/mL), estradiol (1 μg/mL), follicle stimulating hormone (FSH 0,02 UI/mL) và lutenizing hormone (LH 0,01 UI/mL). Sau 18 ngày nuôi tăng trưởng nang noãn, thu nhận và nuôi thành thục noãn bào trong 24 giờ. Chỉ tiêu đánh giá dựa vào sự tăng kích thước nang và sự hình thành thể cực thứ nhất. Kết quả cho thấy nuôi cấy nang noãn hình thành xoang sớm (đường kính
Từ khóa: Nang noãn, nuôi cấy nang noãn, sự phát triển nang noãn, yếu tố tăng trưởng

Article Details

Tài liệu tham khảo

Ngô Thị Mai Hương, Nguyễn Thị Thanh Giang, Nguyễn Tấn Cường, Trần Thanh Tiếng, Phan Kim Ngọc và Dương Hoa Xô, 2011. Một số cải tiến trong quy trình tạo phôi bò in vitro làm tăng hiệu suất tạo phôi đến giai đoạn phôi nang. Tạp chí Sinh học. 36(1): 112-120.

Araújo, V.R., Gastal, M.O., Figueiredo, J.R., and Gastal, E.L., 2014. In vitro culture of bovine preantral follicles: a review. Reproductive Biology and Endocrinology. 12(1): 78.

Berisha, B., Sinowatz, F., and Schams, D., 2004. Expression and localization of fibroblast growth factor (FGF) family members during the final growth of bovine ovarian follicles. Molecular Reproduction and Development: Incorporating Gamete Research. 67(2): 162-171.

Chambers, E., Gosden, R., Yap, C., and Picton, H., (2010). In situ identification of follicles in ovarian cortex as a tool for quantifying follicle density, viability and developmental potential in strategies to preserve female fertility. Human reproduction. 25(10): 2559-2568.

Geshi, M., Takenouchi, N., Yamauchi, N., and Nagai, T., 2000. Effects of Sodium Pyruvate in NonserumMaturation Medium on Maturation, Fertilization, and Subsequent Development of Bovine Oocytes Withor Without Cumulus Cells. Biology of Reproduction. 36(6): 1730-1734.

Gutierrez, C.G., Ralph, J.H., Telfer, E.E., WilmutI., and Webb, R., 2000. Growth and antrum formation of bovine preantral follicles in long-term culture in vitro. Biology of Reproduction. 62(5): 1322-1328.

Hirao, Y., Somfai, T., and Naruse, K., 2014. In vitro growth and maturation of vitrified-warmed bovine oocytes collected from early antral follicles. Journal of Reproduction and Development. 60(1): 68-72.

Huang, W., Nagano, M., Kang, S.S., Yanagawa, Y. and Takahashi, Y., 2013. Effects of in vitro growth culture duration and prematurationculture on maturational and developmental competences of bovine oocytes derived from early antral follicles. Theriogenology. 80(7): 793-799.

Hulshof, S.C.J., Figueiredo, J.R., Becker,sJ.F., BeversM.M., and Van Den HurkR., 1994. Isolation and characterization of preantral follicles from foetalbovine ovaries. Veterinary Quarterly. 16(2): 78-80.

Jewgenow, K., Penfold, L.M., Meyer, H.H., Wildt, D.E., 1998. Viability of small preantral ovarian follicles from domestic cats after cryoprotectant exposure and cryopreservation. Journal of reproduction and fertility. 112(1): 39-47.

Jorssen, E. P., Langbeen, A., Fransen, E., Martinez, E. L., Leroy, J. L., andBols, P. E., 2014. Monitoring preantral follicle survival and growth in bovine ovarian biopsies by repeated use of neutral red and cultured in vitro under low and high oxygen tension. Theriogenology. 82(3): 387-395.Katska, L., and Ryńska, B., 1998. The isolation and in vitro cultureof bovine preantral and early antral follicles of different size classes. Theriogenology. 50(2): 213-222.

Saha, S., Shimizu, M., Geshi, M., and Izaike, Y., 2000. In vitro culture of bovine preantral follicles. Animal reproduction science. 63(1): 27-39.

Senbon, S., and Miyano, T., 2002. Bovine oocytes in early antral follicles grow in serum-free media: effect of hypoxanthine on follicular morphology and oocyte growth. Zygote. 10(4): 301-309.

Telfer, E. E., Binnie, J. P., and Jordan, L. B., 1998. Effect of follicle size on the onset of apoptotic cell death in cultured bovine ovarian follicles. Theriogenology. 1(49): 357 -363.

Xiao, X., Zi, X. D., Niu, H. R., et al., 2014. Effect of addition of FSH, LH and proteasome inhibitor MG132 to in vitro maturation medium on the developmental competence of yak (Bos grunniens) oocytes. Reproductive Biology and Endocrinology. 12(1): 30-38.

Younis, A. I., Brackett, B. G., and Fayrer‐Hosken, R. A., 1989. Influence of serum and hormones on bovine oocyte maturation and fertilization in vitro. Gamete research. 23(2): 189-201.